Venipunktur - Venipuncture
I medicin er venepunktur eller venepunktur processen med at opnå intravenøs adgang med henblik på venøs blodprøvetagning (også kaldet flebotomi ) eller intravenøs behandling . I sundhedsvæsenet udføres denne procedure af medicinske laboratorieforskere , læger , nogle EMT'er , paramedicinere , flebotomister , dialyseteknikere og andet plejepersonal. I veterinærmedicin udføres proceduren af dyrlæger og veterinærteknikere .
Det er vigtigt at følge en standardprocedure for indsamling af blodprøver for at få nøjagtige laboratorieresultater. Enhver fejl ved opsamling af blod eller fyldning af reagensglas kan føre til fejlagtige laboratorieresultater.
Venipunktur er en af de mest rutinemæssigt udførte invasive procedurer og udføres af en af fem årsager:
- at skaffe blod til diagnostiske formål;
- at overvåge niveauer af blodkomponenter;
- at administrere terapeutiske behandlinger, herunder medicin, ernæring eller kemoterapi;
- at fjerne blod på grund af for store niveauer af jern eller erytrocytter ( røde blodlegemer ) eller
- at indsamle blod til senere brug, hovedsageligt transfusion enten i donoren eller hos en anden person .
Blodanalyse er et vigtigt diagnostisk værktøj til rådighed for klinikere inden for sundhedsvæsenet.
Blod opnås oftest fra de overfladiske vener i overekstremiteten. Den mediane kubitale vene , der ligger inden i den cubital fossa anterior til albuen, er tæt på overfladen af huden uden mange store nerver placeret i nærheden. Andre vener, der kan bruges i den kubitale fossa til venepunktur, omfatter cephaliske , basiliske og mediane antebrachiale vener .
Minutmængder blod kan tages ved hjælp af fingerstikprøveudtagning og opsamles fra spædbørn ved hjælp af en hælstik eller fra hovedbundvener med en vinget infusionsnål .
Flebotomi (snit i en vene) er også behandling af visse sygdomme, såsom hæmokromatose og primær og sekundær polycytæmi .
Komplikationer
En undersøgelse af bloddonorer fra 1996 (en større nål bruges til bloddonation end ved rutinemæssig venepunktur) fandt ud af, at 1 ud af 6.300 donorer fik en nerveskade.
Udstyr
Der er mange måder, hvorpå blod kan trækkes fra en vene, og den anvendte metode afhænger af personens alder, det tilgængelige udstyr og den type test, der kræves.
De fleste blodindsamlinger i USA, Storbritannien, Canada og Hong Kong sker med et evakueret rørsystem. To almindelige systemer er Vacutainer (Becton, Dickinson og firma) og Vacuette (Greiner Bio-One). Udstyret består af en plastadapter, også kendt som et rør eller nåleholder/nav, en indvendig nål og et vakuumrør. Under visse omstændigheder kan en sprøjte bruges, ofte med en sommerfuglnål , som er et plastkateter fastgjort til en kort nål. I udviklingslandene er det evakuerede rørsystem den foretrukne metode til at trække blod.
Med evakuerede eller vakuumrør
Greiner Bio-One fremstillede det første evakuerede blodopsamlingsrør nogensinde i 1985 under mærket VACUETTE. I dag sælger mange virksomheder vakuumrør, da patentet på denne enhed nu er i offentligheden. Disse rør fremstilles med et specifikt volumen gas fjernet fra det forseglede rør. Når en nål fra en hub eller overføringsenhed indsættes i proppen, trækker rørets vakuum automatisk den nødvendige mængde blod ind.
Det grundlæggende evakuerede rørsystem (ETS) består af en nål, en rørholder og de evakuerede rør. Nålen fastgøres til rørholderen af phlebotomisten inden opsamling eller kan komme fra producenten som en enhed. Nålen stikker ud gennem enden af rørholderen og har en nål i hver ende. Efter først at have rengjort venepunktionsstedet og påført en turniquet, åbner phlebotomisten nålen, der er fastgjort til rørholderen, og sætter nålen ind i venen, og derefter glider de evakuerede rør ind i rørholderen, hvor rørets prop er gennemboret af bagsiden af nål. Vakuumet i røret trækker derefter automatisk det nødvendige blod direkte fra venen. Flere vakuumrør kan fastgøres til og fjernes igen fra en enkelt nål, så flere prøver kan opnås fra en enkelt procedure. Dette er muligt på grund af flere prøvehylstre, som er en fleksibel gummifitting over nålkanylens bageste ende, som forsegler nålen, indtil den skubbes af vejen. Dette forhindrer blod i at løbe frit ud af nålens bagside, der indsættes i venen, da hvert reagensglas fjernes og det næste pæles. OSHAs sikkerhedsforskrifter kræver, at nåle eller rørholdere er udstyret med en sikkerhedsanordning til at dække nålen efter proceduren for at forhindre utilsigtet nålestiksskade.
Beslag og adaptere, der bruges til at fylde evakuerede rør fra butterfly nålesæt og sprøjter, er også tilgængelige.
Der er flere måleinstrumenter, som en phlebotomist kan vælge imellem. De mest almindeligt anvendte er som følger: en 21g (grøn top) nål, en 22g (sort top) nål, en 21g (grøn etiket) sommerfuglenål, en 23g (lyseblå etiket) sommerfuglenål og en 25g (orange eller mørk blå etiket) sommerfuglnål (denne nål bruges dog kun i pædiatri eller i ekstreme tilfælde, da den er så lille, at den ofte kan resultere i hæmolysering af blodprøven). Der findes også en række rør og flasker i størrelser og mængder til forskellige testkrav.
Tilsætningsstoffer og trækorden
De reagensglas, hvor blod opsamles, kan indeholde et eller flere af flere tilsætningsstoffer. Generelt kræver test, der kræver fuldblod, blodprøver opsamlet i reagensglas, der indeholder en eller anden form for antikoagulerende EDTA . EDTA chelaterer calcium for at forhindre koagulation. EDTA foretrækkes til hæmatologiske tests, fordi det gør mindst mulig skade på cellemorfologi. Natriumcitrat er antikoagulanten, der bruges i prøver, der er indsamlet til koagulationstest. Størstedelen af kemi- og immunologi -test udføres på serum, som produceres ved koagulering og derefter adskillelse af blodprøven via centrifuge. Disse prøver opsamles i enten et ikke-additivt rør eller et, der indeholder en koagulationsaktivator . Denne koagulationsaktivator kan forstyrre nogle assays , og derfor anbefales et almindeligt rør i disse tilfælde, men forsinker testen. Rør indeholdende lithiumheparin eller natriumheparin bruges også almindeligt til en række kemitest, da de ikke kræver koagulering og kan centrifugeres umiddelbart efter opsamling. En kombination af natriumfluorid og kaliumoxalat bruges til glukosetest, da disse tilsætningsstoffer både forhindrer koagulation og stopper glykolose, så blodglukoseniveauer bevares efter opsamling. Et andet specialrør er et uigennemsigtigt ravfarvet rør, der bruges til at opsamle blod til lysfølsomme analytter, såsom bilirubin .
Reagensglas er mærket med det tilsætningsstof, de indeholder, men proppen på hvert rør er også farvekodet efter tilsætningsstoffet. Selvom farverne varierer mellem producenterne, er propfarver generelt forbundet med hvert additiv som angivet nedenfor. Fordi tilsætningsstofferne fra hvert rør kan efterlades på nålen, der bruges til at fylde rørene, skal de tegnes i en bestemt rækkefølge for at sikre, at krydskontaminering ikke vil påvirke testning af prøverne negativt, hvis flere rør skal tegnes på én gang. "Trækningsrækkefølgen" varierer efter indsamlingsmetode. Nedenfor er den mest almindelige rør, der indeholder tilsætningsstof og farve:
| Rørhætte farve eller type | Tilsætningsstof | Anvendelse og kommentarer |
|---|---|---|
| Blod kultur flaske | Natriumpolyanetholsulfonat ( antikoagulant ) og vækstmedier til mikroorganismer | Normalt tegnes først for minimal risiko for kontaminering. To flasker opsamles typisk i ét blodtræk; en for aerobe organismer og en for anaerobe organismer . |
| Lyseblå | Natrium citrat (antikoagulant) | Koagulationstest såsom protrombintid (PT) og delvis tromboplastintid (PTT) og trombintid (TT). Røret skal fyldes 100%. |
| Almindelig rød | Intet tilsætningsstof | Serum : Total komplementaktivitet , kryoglobuliner |
| Guld (undertiden rød og grå "tiger top") | Koagulationsaktivator og serum adskille gel | Serumseparerende rør : Rørinversioner fremmer koagulation. De fleste kemi-, endokrine og serologiske test, herunder hepatitis og HIV . |
| Mørkegrøn | Natrium heparin (antikoagulant) | Kromosomtest, HLA -typning, ammoniak , laktat |
| Mintgrøn | Lithium heparin (antikoagulant) | Plasma . Rørinversioner forhindrer koagulation |
| Lavendel ("lilla") | EDTA ( chelator / antikoagulant) | Fuldblod : CBC , ESR , Coombs -test , trombocytantistoffer, flowcytometri , blodniveauer af tacrolimus og cyclosporin |
| Lyserød | EDTA (chelator / antikoagulant) | Blodtypning og krydsmatchning , direkte Coombs-test , HIV- viral belastning |
| kongeblå | EDTA (chelator / antikoagulant) | Sporstoffer, tungmetaller, de fleste lægemiddelniveauer, toksikologi |
| Tan | EDTA (chelator / antikoagulant) | At føre |
| Grå |
|
Glukose , laktat |
| Gul | Acid-citrate-dextrose A (antikoagulant) | Vævstypning , DNA -undersøgelser, hiv -kulturer |
| Perle ("hvid") | Adskillelsesgel og (K 2 ) EDTA | PCR for adenovirus , toxoplasma og HHV-6 |
Hos børn
Brug af lidokain -iontoforese er effektiv til at reducere smerter og lindre nød under venepunktur hos børn. Et nålfrit pulverlignocain- leveringssystem har vist sig at reducere smerterne ved venepunktur hos børn. Hurtig dermal bedøvelse kan opnås ved lokalbedøvelsesinfiltration, men det kan fremkalde angst hos børn, der er bange for nåle eller forvrænger huden, hvilket gør vaskulær adgang vanskeligere og øger risikoen for nåleeksponering for sundhedspersonale. Dermalbedøvelse kan også opnås uden nåle ved lokal anvendelse af lokalbedøvelse eller ved lidokainiontoforese. I modsætning hertil kan ikke -invasiv dermal bedøvelse etableres i 5–15 minutter uden at forvrænge underliggende væv ved lidokainiontoforese, hvor en direkte elektrisk strøm letter hudindtrængning af positivt ladede lidokainmolekyler, når de placeres under den positive elektrode.
En undersøgelse konkluderede, at iontoforetisk administration af lidokain var sikker og effektiv til at give dermal bedøvelse til venepunktur hos børn 6-17 år. Denne teknik er muligvis ikke anvendelig for alle børn. Fremtidige undersøgelser kan give oplysninger om den mindste effektive iontoforetiske dosis for dermal anæstesi hos børn og sammenligning af anæstetisk effekt og tilfredshed af lidocain -iontoforese med topiske bedøvelsescremer og subkutan infiltration.
Ikke-farmakologiske behandlinger for smerter forbundet med venepunktur hos børn omfatter hypnose og distraktion. Disse behandlinger reducerede selvrapporterede smerter, og i kombination med kognitiv adfærdsterapi (CBT) var reduktionen af smerter endnu større. Andre interventioner har ikke vist sig at være effektive, og det er forslag, blæsning af luft og distraktion med forældrenes coaching adskilte sig ikke fra kontrol med smerter og nød.
Med nål og sprøjte
Nogle sundhedspersonale foretrækker at bruge en sprøjte -nåle teknik til venepunktur. Sarstedt fremstiller et blodtrækningssystem (S-Monovette), der anvender dette princip. Denne metode kan foretrækkes hos ældre, mennesker med kræft, alvorlige forbrændinger, fedme eller hvor venerne er upålidelige eller skrøbelige. Fordi sprøjter betjenes manuelt, kan mængden af indsugning let kontrolleres. Dette er især nyttigt, når venerne er små, som kan kollapse under sugning af et evakueret rør. I børn eller andre omstændigheder, hvor mængden af opnået blod kan være begrænset, kan det være nyttigt at vide, hvor meget blod der kan opnås, før det fordeles mellem de forskellige tilsætningsstoffer, som laboratoriet vil kræve. Et andet alternativ er at trække blod fra indbyggede kanyler.
Blodkulturer
Der er tidspunkter, hvor en blodkulturindsamling er påkrævet. Kulturen vil afgøre, om der er patogener i blodet. Normalt er blod sterilt. Når du trækker blod fra kulturer, skal du bruge en steril opløsning som Betadine frem for alkohol . Dette gøres ved hjælp af sterile handsker, mens den kirurgiske løsning ikke tørres væk, rører punkteringsstedet eller på nogen måde kompromitterer den sterile proces. Det er vigtigt, at proceduren udføres på en så steril måde som muligt, da den vedvarende tilstedeværelse af hudkommensaler i blodkulturer kan indikere endokarditis, men de findes oftest som kontaminanter. Det tilskyndes til at bruge en slibemetode til forberedelse af huden. Dette fjerner de øverste lag af døde hudceller sammen med deres kontaminerende bakterier. Povidon-iod er traditionelt blevet brugt, men i Storbritannien foretrækkes en 2% chlorhexidin i 70% ethanol eller isopropylalkoholopløsning, og det skal have tid til at tørre. Toppene på alle beholdere, der bruges til at tegne en blodkultur, bør også desinficeres ved hjælp af en lignende opløsning. Nogle laboratorier vil aktivt fraråde jodbrug, hvor jod menes at nedbryde gummiproppen, gennem hvilken blod kommer ind i flasken, og dermed tillade forurenede stoffer at komme ind i beholderen.
Blodet opsamles i særlige transportflasker, som er som vakuumrør, men formet forskelligt. Blodkulturflasken indeholder transportmedier for at bevare eventuelle tilstedeværende mikroorganismer, mens de transporteres til laboratoriet til kulturer. Fordi det er ukendt, om patogenerne er anaerobe (lever uden ilt) eller aerobe (lever med ilt), opsamles blod for at teste for begge. Den aerobe flaske fyldes først, og derefter fyldes den anaerobe flaske. Men hvis opsamlingen udføres ved hjælp af en sprøjte, fyldes den anaerobe flaske først. Hvis der bruges et sommerfuglopsamlingssæt, fyldes den aerobe flaske først, så al luft i slangen frigives til den iltholdige flaske.
Specielt designet blodkulturopsamlingsflasker eliminerer behovet for enten sprøjte- eller sommerfuglopsamlingsmetode. Disse specialdesignede flasker har lange halse, der passer ind i de evakuerede rørholdere, der bruges til regelmæssig indsamling af venepunkter. Disse flasker tillader også indsamling af andre blodprøver via evakuerede rør, der skal opsamles uden yderligere venepunktur.
Mængden af blod, der opsamles, er afgørende for optimal genopretning af mikroorganismer. Op til 10 ml blod er typisk, men kan variere i henhold til anbefalingerne fra producenten af opsamlingsflasken. Indsamling fra spædbørn og børn er 1 til 5 ml. Hvis der opsamles for lidt blod, forhindrer forholdet mellem blod-til-næringsstof bouillon væksten af mikroorganismer. Hvis der opsamles for meget blod, er der risiko for en hospitalsinduceret anæmi, og forholdet mellem blod og næringsstof bouillon vil vippe i den modsatte retning, hvilket heller ikke er ledende for optimal vækst.
Flaskerne inkuberes derefter i specialiserede enheder i 24 timer, før en laboratorietekniker studerer og/eller tester det. Dette trin tillader det meget lille antal bakterier (potentielt 1 eller 2 organismer) at formere sig til et niveau, der er tilstrækkeligt til identifikation +/- antibiotikaresistens test. Moderne blodkulturflasker har en indikator i basen, der ændrer farve i tilstedeværelse af bakterievækst og kan læses automatisk med maskine. (Af denne grund bør de stregkodede klistermærker, der findes på disse flasker, ikke fjernes, da de bruges af laboratoriets automatiserede systemer.)
Tag blodprøver fra dyr
Blodprøver fra levende laboratoriedyr kan indsamles ved hjælp af følgende metoder:
- Blodopsamling, der ikke kræver bedøvelse:
- Saphenøs vene (rotte, mus, marsvin)
- Dorsal pedal vene (rotte, mus)
- Blodindsamling, der kræver anæstesi (lokal/generel anæstesi):
- Haleåre (rotte, mus)
- Hale snip (mus)
- Orbital sinus (rotte, mus)
- Jugular vene (rotte, mus)
- Midlertidig kanyle (rotte, mus)
- Blodkar -kanyle (marsvin, ilder)
- Tarsal vene (marsvin)
- Marginal ørevene eller arterie (kanin)
- Terminalprocedure:
- Hjertepunktur (rotte, mus, marsvin, kanin, ilder)
- Orbital sinus (rotte, mus)
- Posterior vena cava (rotte, mus)
Mængden af blodprøvetagning er meget vigtig hos forsøgsdyr. Al ikke -terminal blodopsamling uden udskiftning af væsker er begrænset op til 10% af det samlede cirkulerende blodvolumen hos raske, normale, voksne dyr ved en enkelt lejlighed, og opsamling kan gentages efter tre til fire uger. Hvis der kræves gentagne blodprøver med korte intervaller, kan maksimalt 0,6 ml/kg/dag eller 1,0% af et dyrs samlede blodvolumen fjernes hver 24. time. Det estimerede blodvolumen hos voksne dyr er 55 til 70 ml/kg legemsvægt. Der skal udvises omhu for ældre og overvægtige dyr. Hvis blodopsamlingsvolumen overstiger mere end 10% af det samlede blodvolumen, kan det være nødvendigt at udskifte væske. Ammeres Ringer -opløsning (LRS) anbefales som den bedste væskeerstatning af National Institutes of Health (NIH). Hvis mængden af blodopsamling overstiger mere end 30% af det samlede cirkulationsblodmængde, skal der tages tilstrækkelig omhu, så dyret ikke lider af hypovolæmi.
Alkoholprøver i blodet
Det er generelt ikke tilrådeligt at bruge isopropylalkohol til at rense venepunktionsstedet, når man får en prøve til en blodalkoholtest . Dette har i høj grad været relateret til de potentielle juridiske konsekvenser forbundet med brug af alkoholbaserede rengøringsmidler, der teoretisk set kan påvirke analysen. Der er blevet markedsført utallige politi-alkoholindsamlingssæt, der indeholder et natriumfluorid/kaliumoxalat-konserveringsmiddel og ikke-alkoholbaserede rensemidler for at sikre korrekt opsamling. Brug af sæbe og varmt vand eller en povidon- jodpind er tilrådelige alternativer til isopropylalkohol i dette tilfælde.
Se også
- Arterielt blod tages fra en arterie i stedet for en vene